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      病毒RNA提取實驗前準備及重要注意事項
      點擊次數:3314 更新時間:2022-06-23

        

      病毒RNA提取試劑盒說明書

       

      RNApure Virus Kit

       

      目錄號:K0586

       

      運輸條件:室溫(15-25℃)。

       

      保存條件:室溫(15-25℃)。

       

      組分說明

      Size

      50

      Buffer RLV

      15 ml

      Buffer RW1

      40 ml

      Buffer RW2concentrate

      11 ml

      Proteinase K

      12.5 mg

      Proteinase K Storage Buffer

      1.25 ml

      RNase-Free Water

      10 ml

      Spin Column RS

      50

      Collection Tube1.5 ml

      50

      Collection Tube2 ml

      50

       

                    



      本產品僅供科研使用,請勿用于臨床診斷及其他用途  

       

      產品簡介

       

        本試劑盒采用可以特異性結合病毒 RNA的吸附柱和*的緩沖液系統,適用于從

      血清、血漿、尿液、腦脊液等無細胞體液及細胞培養上清液中分離病毒RNA。病毒

      RNA特異性地結合到硅基質膜上,而污染物則流過該膜。通過兩次高效洗滌*去除

      蛋白質等雜質,然后用無RNase的水或試劑盒提供的RNase-Free  Water洗脫高純度的

      病毒RNA。由本試劑盒提取的病毒RNA可直接用于RT-PCRReal-time  RT-PCR和印

      跡分析等實驗。

       

      自備試劑:無水乙醇,0.9% NaCl

       

      實驗前準備及重要注意事項

       

      1.向Proteinase K中加入1.25 ml Proteinase K Storage Buffer使其溶解,-20℃保存。

         配制好的Proteinase  K勿長時間室溫放置,避免反復凍融,以免影響其活性。

      2.預防RNase污染,應注意以下幾方面:

         1)使用無RNase的塑料制品和槍頭,避免交叉污染。

         2)玻璃器皿應在使用前于180℃高溫下干烤4小時,塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸

         10分鐘,用水*沖洗后高壓滅菌。

         3)配制溶液應使用無RNase的水。

         4)操作人員戴一次性口罩和手套,實驗過程中要勤換手套。

      3.血清或血漿避免反復凍融導致蛋白變性或產生沉淀,減少病毒滴度進而影響提取病

         毒核酸的產量。

      4.第一次使用前應按照試劑瓶標簽的說明先在Buffer RW2中加入無水乙醇。

      5Buffer RLV如果產生沉淀,可在56℃加熱使其溶解后室溫放置。

      6.所有離心步驟若無特殊說明均在室溫下進行,且所有操作步驟動作要迅速。

       

      操作步驟

       

      1.室溫下取200 μl血清或血漿加到1.5 ml離心管(自備)中。

         注意:不足200 μl可以加入0.9 % NaCl(客戶自備)補足。

      2.向上步溶液中加入20 μl Proteinase K,混勻。

      3.加入200 μl Buffer RLV,渦旋震蕩15秒。

       

         注意:不要直接把Proteinase K加到Buffer RLV中。

      456℃孵育15分鐘,短暫離心,將管壁上的溶液收集到管底。

      5.加入250 μl無水乙醇,渦旋震蕩15秒,室溫孵育5分鐘,短暫離心,將管壁上的溶液

         收集到管底。

      6.將步驟5得溶液全部加入到已裝入收集管(Collection  Tube 2  ml)的吸附柱(Spin

         Column RS)中,若一次不能將全部溶液加入吸附柱中,請分兩次轉入,8,000 rpm

         ~6000 ×g)離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。

      7.向吸附柱中加入500 μl Buffer RW18,000 rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,

         將吸附柱重新放回收集管中。

      8.向吸附柱中加入500 μl Buffer RW2(使用前檢查是否加入無水乙醇),8,000  rpm

         離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。

      9.向吸附柱中加入500 μl無水乙醇,8,000 rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將

         吸附柱重新放回收集管中。

      10.12,000 rpm (~13,400×g)離心3分鐘,倒掉收集管中的廢液。將吸附柱置于室溫數分

         鐘,以*晾干。

       

         注意:1)這一步的目的是將吸附柱中殘余乙醇去除,乙醇的殘留會影響后續的酶促反應(酶切、

         PCR等)。

       

         2)推薦步驟:將吸附柱放入一個新的1.5 ml離心管(自備)中,打開管蓋,56℃烘箱孵育3分鐘,

         使吸附柱的膜*干燥。

      11.將吸附柱置于一個新的無RNase離心管(Collection Tube 1.5  ml)中,向吸附柱的

         中間部位懸空加入20-50 μl RNase-Free Water,室溫放置5分鐘,12,000 rpm離心

         1分鐘,收集RNA溶液,-70℃保存RNA,防止降解。

       

         注意:1RNase-Free Water體積不應小于20 μl,體積過小影響回收率。

         2)如果要提高RNA的產量,可用20-50 μl新的RNase-Free Water重復步驟11

       

         3)如果要提高RNA濃度,可將得到的溶液重新加入到吸附柱中,重復步驟11

       

      相關產品信息

       

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      2011年開始我們致力于在生命科學領域生物醫學實驗外包及論文潤色服務,協助客戶各類實驗服務及論文潤色,是客戶您值得信賴的科研合作伙伴!

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      實驗代做服務:

       



       

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