過氧化物酶(Peroxidase，POD)試劑盒說明書

可見分光光度法

試劑的組成：

提取液：液體60mL×1瓶，4℃保存；

試劑一：液體60mL×1瓶，4℃保存；

試劑二：液體×2瓶，4℃保存；用時每瓶加入5mL試劑一；用不完的試劑4℃保存一周；

試劑三：液體10 mL×1瓶，4℃保存。

測定意義：

POD（EC 1.11.1.7）廣泛存在于動物、植物、微生物和培養細胞中，可催化過氧化氫氧化酚類和胺類化合物，具有消除過氧化氫和酚類、胺類毒性的雙重作用。POD催化H₂O₂氧化特定底物，在470nm有特征光吸收。

需自備的儀器和用品：

可見分光光度計、臺式離心機、可調式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水

操作步驟：

• 粗酶液提取：

• 細菌、細胞或組織樣品的制備：

細菌或培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；按照細菌或細胞數量（10⁴個）：提取液體積（mL）為500~1000：1的比例（建議500萬細菌或細胞加入1mL提取液），超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10s，重復30次）；8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

組織：按照組織質量（g）：提取液體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL提取液），進行冰浴勻漿。8000g 4℃離心10min，取上清，置冰上待測。

• 血清（漿）樣品：直接檢測。

• 測定步驟和加樣表：

測定前將試劑一、二和三37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）放置10min。在1mL玻璃比色皿中按順序加入上述試劑，立即混勻并計時，記錄470nm下30s時的吸光值A1和1min30s后的吸光值A2。計算ΔA＝A2-A1。

注意：

• 若一次性測定樣本較多，可將試劑一、二、三和蒸餾水按比例配成混合液，在37℃（哺乳動物）或25℃（其它物種）放置10min以上，測定時加入15µL樣本和1055µL混合液測定。
• 如果ΔA小于0.005，可將反應時間延長到5min。如果ΔA大于0.5，可將樣本用提取液稀釋后測定，計算公式中乘以相應稀釋倍數。

三、POD活性計算：

• 血清（漿）POD活性

單位定義：每mL血清（漿）在每mL反應體系中每分鐘A470變化0.01為一個酶活力單位。

計算公式：POD（U/mL）=ΔA×V反總÷V樣÷0.01÷T =7133×ΔA

• 組織、細菌或細胞POD活性

• 按樣本蛋白濃度計算

單位定義：每mg組織蛋白在每mL反應體系中每分鐘A470變化0.01為一個酶活力單位。

POD（U/mg prot）＝ΔA×V反總÷（V樣×Cpr）÷0.01÷T =7133×ΔA÷Cpr

• 按樣本鮮重計算

單位定義：每g組織在每mL反應體系中每分鐘A470變化0.01為一個酶活力單位。

POD（U/g 鮮重）＝ΔA×V反總÷(W× V樣÷V樣總)÷0.01÷T =7133×ΔA÷W

• 按細菌或細胞密度計算

單位定義：每1萬個細菌或細胞在每mL反應體系中每分鐘A470變化0.01為一個酶活力單位。

POD（U/10⁴ cell）＝ΔA×V反總÷(500×V樣÷V樣總)÷0.01÷T =14.27×ΔA

V反總：反應體系總體積，1.07mL； V樣：加入樣本體積，0.015mL；V樣總：加入提取液體積，1 mL；T：反應時間，1 min；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量；500：細菌或細胞總數，500萬。

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